研究目的
通过ATR-FTIR光谱技术比较前列腺癌干细胞、前列腺癌细胞和正常前列腺上皮细胞,在分子水平上识别其细胞机制和生化结构的差异,并阐明对改进靶向特异性治疗至关重要的CSCs分子机制和特征。
研究成果
基于生化与生物物理特性,ATR-FTIR光谱技术成功区分了前列腺癌干细胞与非癌干细胞及正常细胞。癌干细胞表现出脂酰链无序排列、膜流动性增强、富含α-螺旋的蛋白质含量升高、RNA水平提升、核酸构象改变以及大量碳水化合物和带负电荷分子的存在。这些差异提示癌干细胞具有更高的转录活性、代谢变化,以及转移和治疗抵抗的潜在能力。该技术为靶向抗癌治疗中的癌干细胞提供了新见解。
研究不足
使用ATR-FTIR光谱测定细胞数量具有挑战性,因为放置在ATR晶体上的细胞很可能是多层重叠的,这可能会影响吸光度光谱。为获得稳定且可重现的光谱,细胞必须与ATR晶体良好接触。此外,该研究仅针对特定细胞系(DU-145和RWPE-1),可能无法推广至所有前列腺癌类型。
1:实验设计与方法选择:
本研究采用衰减全反射傅里叶变换红外光谱(ATR-FTIR)结合无监督多元分析(主成分分析和层次聚类分析)对前列腺癌干细胞(CSCs)、非干细胞癌细胞(非CSCs)和正常前列腺上皮细胞进行表征。实验设计通过基于CD133和CD44表面标记的荧光激活细胞分选法从DU-145细胞系中分离CSCs,随后对细胞悬液进行FTIR测量。
2:样本选择与数据来源:
使用人前列腺癌细胞系DU-145和人前列腺上皮细胞系RWPE-1。从DU-145细胞中分离出CD133+/CD44+群体的CSCs。每种细胞类型(CSCs、非CSCs、正常细胞)培养三个独立样本,并通过将细胞重悬于生理NaCl溶液制备样品。
3:实验设备与材料清单:
设备包括配备ATR单元和DLATGS检测器的IRTracer-100 FTIR光谱仪(岛津)、FACS Aria II荧光激活细胞分选仪(BD)、Muse细胞分析仪(密理博)、奥林巴斯BX 51显微镜(奥林巴斯)及培养箱(纽布朗斯维克)。材料包括细胞培养基(RPMI-1640、Life Technologies的角质形成细胞SFM)、抗体(Miltenyi Biotec的CD133-PE、CD44-APC)及化学试剂(PBS、多聚甲醛、苏木精、伊红来自Sigma-Aldrich)。
4:Life Technologies的角质形成细胞SFM)、抗体(Miltenyi Biotec的CD133-PE、CD44-APC)及化学试剂(PBS、多聚甲醛、苏木精、伊红来自Sigma-Aldrich)。 实验流程与操作步骤:
4. 实验流程与操作步骤:培养细胞后通过FACS分离CSCs并评估活性。FTIR测量时将1.5 µl细胞悬液滴于金刚石ATR晶体上干燥,在4000-800 cm-1范围内以4 cm-1分辨率记录128次扫描的光谱。每份样本重复测量三次,每次至少获取5条光谱。
5:5 µl细胞悬液滴于金刚石ATR晶体上干燥,在4000-800 cm-1范围内以4 cm-1分辨率记录128次扫描的光谱。每份样本重复测量三次,每次至少获取5条光谱。 数据分析方法:
5. 数据分析方法:光谱预处理包括大气水汽扣除、基线校正(橡皮筋法)及酰胺II带面积归一化。统计分析采用Student's t检验、主成分分析(PCA)和层次聚类分析(HCA),通过MATLAB中的Kinetics软件完成。
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获取完整内容-
FTIR Spectrometer
IRTracer-100
Shimadzu
Perform Fourier transform infrared spectroscopy measurements with attenuated total reflection unit for analyzing cellular macromolecules.
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Microscope
BX 51
Olympus
Visualize cells after hematoxylin and eosin staining for morphological analysis.
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Software
LabSolutions
Shimadzu
Record and process FTIR spectra from the spectrometer.
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Cell Sorter
FACS Aria II
Becton Dickinson
Fluorescence activated cell sorting for isolating CD133+/CD44+ cancer stem cells from DU-145 cell line.
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Cell Analyzer
Muse Cell Analyzer
Millipore
Analyze cell count and viability using Cell Count & Viability Kit.
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Incubator
New Brunswick
Maintain cell cultures in humidified atmosphere with 5% CO2.
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Software
Kinetics
Perform spectral preprocessing, principal component analysis, hierarchical cluster analysis, and Student's t-test for FTIR data.
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